电泳10ap怎么配置
Ⅰ 电泳浓缩胶浓度怎么选取
浓缩胶一般都是5%的，下面的是5ML的配方，其余的你可以自己算了
5ml
H2O 3.6
acrylamide mix（30%） 0.62
1M Tris(PH6.8) 0.63
10% SDS 0.05
10% AP 0.05
TEMED 0.005
Ⅱ 电泳阳极液怎么配置,需要哪些材料配置方法
阴极电泳涂装的阳极液配置,主要材料用纯水和醋酸.将纯水放入阳极槽内,加入10-15的醋酸,启动循环泵,进行阳极液与阳极柱的循环,测定电导率达到500us/cm就完成阳极液配置了.如果电导率达不到,可以适量补加醋酸,将电导率调整到要求就可以了.
Ⅲ 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳的实验步骤
1、PAGE胶电泳缓冲液配置
1）丙烯酰胺单体贮液：14.55g丙烯酰胺加上0.45g N，N'-甲叉双丙烯酰胺，先用40mL双蒸水搅拌溶解，直到溶液变成透明，再用双蒸水稀至50mL，过滤。用棕色瓶4°C保存备用。
2)浓缩胶缓冲液贮液(0.5mol/L Tris-HCl，pH6.8)：3.03gTris溶解在40mL双蒸水中，用4mol/L盐酸调pH6.8。再用双蒸水稀至50mL。保存在4°C备用。
3)分离胶缓冲液贮液(1.5mol/L Tris-HCl，pH8.9)：18.16gTris溶解在80mL双蒸水中，用4mol/L盐酸调pH8.9。再用双蒸水稀至100mL，保存在4°C备用。
4)10%（AP）过硫酸铵：0.1g过硫酸铵溶入1.0mL双蒸水，使用前新鲜配制。
5)电极缓冲液(0.025mol/L Tris，0.2mol/L甘氨酸，pH8.3)：15.14gTris加上72.07g甘氨酸，用双蒸水稀释到5L。可在室温保存一个月。
6）样品缓冲液（0.1mol/L Tris-HCl，pH6.8）：2ml浓缩胶缓冲液贮液加上1mL87%甘油、0.1mg溴酚蓝，用双蒸水稀释至10mL，可在-20°C保存6个月。
2、Native-PAGE配方 分离胶： 双蒸水 6.6ml 30%丙烯酰胺溶液 8.0ml 1.5mol/L Tris(pH8.8) 5.0ml 10%过硫酸铵溶液 (W/V) 200μl TEMED 15μl 浓缩胶： 双蒸水 6.8ml 30%丙烯酰胺溶液 1.7ml 0.5 mol/ LTris(pH6.8) 1.25ml 10%过硫酸铵溶液 (W/V) 100μl TEMED 10μl 3、Native-PAGE电泳
将玻璃板、胶垫、梳子用双蒸水洗干净，用酒精棉球擦拭，将电泳槽安装好，配制分离胶(12%)和浓缩胶(5%)如表1。过硫酸铵和TEMED最后加入，加入后聚合即开始，应立即混匀倒入两块玻璃板之间。分离胶倒入两块玻璃板间，应该留下适合的高度，使点样孔前端离分离胶有2.5cm左右的距离，在胶顶部缓缓加入约0.5cm高的双蒸水，待分离胶聚合完全后，倾去上层的双蒸水，用双蒸水清洗凝胶顶层，用吸水纸吸去残余的水滴。将浓缩胶倒入玻璃板夹层，插上梳子，待浓缩胶聚合完全后，拔去梳子，立即用双蒸水清洗点样孔。加入电极缓冲液，将样品用微量进样器点入点样孔底部，200伏电泳。当溴酚蓝到达分离胶时，电压改为250伏，继续电泳至溴酚蓝到达凝胶底部。将凝胶剥下，浸泡在100ml的底物液中，染色1小时，待胶带显色后立即照相。然后将凝胶进行常规的考马斯亮蓝染色。
Ⅳ win10无线路由器ap模式怎么设置
把无线网卡插好，安装好所提示的驱动，打开配置程序。
无线网卡如何设置AP模式
点击最后一项配置。
在AP模式中点击“开”。
点击确定。（可能会出错，别去管它）
设置好所有的选项。（这些就不细讲了），然后点击应用。
（这里很大几率会提示失败，没关系，也别去管他，等会儿全部设置好了重新开启一遍就行了）
点击本地连接。
点击属性。
选择高级。
点击“允许其他......”。
点击确定，然后再点击下方的确定。（在4、5步出错的朋友们这时就完全关闭无线网卡的配置程序，重新开启，就能成功啦！）
Ⅳ sds-page凝胶电泳怎么制备
SDS-PAGE电泳可用于分离蛋白质和核苷酸
，这里综述了SDS-PAGE实验原理、试剂和器材、以及实验操作步骤。
一.
实验原理：
SDS-PAGE是对蛋白质进行量化，比较及特性鉴定的一种经济、快速、而且可重复的方法。该法是依据混合蛋白的分子
量不同来进行分离的。
SDS是一种去垢剂，可与蛋白质的疏水部分相结合，破坏其折叠结构，并使其广泛存在于一个广泛均一的溶液中。SDS蛋白质复合物的长度与其分子
量成正比。在样品介质和凝胶中加入强还原剂和去污剂后，电荷因素可被忽略。蛋白亚基的迁移率取决于亚基分子量。
二.
试剂和器材：
试剂：1.
5x样品缓冲液(10ml)：0.6ml
1mol/L的Tris-HCl(pH6.8)，5ml
50%甘油，2ml
10%的SDS，0.5ml巯基乙醇，1ml
1%溴酚蓝，0.9ml蒸馏水。可在4℃保存数周，或在-20℃保存数月。
2.
凝胶贮液：在通风橱中，称取丙烯酰胺30g，甲叉双丙烯酰胺0.8g，加重蒸水溶解后，定容到100ml。过滤后置棕色瓶中，4℃保存，一般可放置1个月。
3.
pH8.9分离胶缓冲液：
Tris
36.3g
，加1mol/L
HCl
48ml，加重蒸水80ml使其溶解，调pH8.9，定容至100ml，
4℃保存。
4.
pH6.7浓缩胶缓冲液：
Tris
5.98g
，加1mol/L
HCl
48ml，加重蒸水80ml使其溶解，调pH6.7，定容至100ml，
4℃保存。
5.
TEMED(四乙基乙二胺)原液
6.10%过硫酸铵(用重蒸水新鲜配制)
7.
pH8.3
Tris-甘氨酸电极缓冲液：称取Tris
6.0g，甘氨酸28.8g，加蒸馏水约900ml，调pH8.3后，用蒸馏水定容至1000ml。置4℃保存，临用前稀释10倍。
8.
考马斯亮蓝G250染色液：称100mg考马斯亮蓝G250，溶于200ml蒸馏水中，慢慢加入7.5ml
70%的过氯酸，最后补足水到250ml，搅拌1小时，小孔滤纸过滤。
器材：电泳仪
，电泳槽，水浴锅，摇床。
三.
实验操作;
1.
样品制备
将蛋白质样品与5X样品缓冲液(20ul+5ul)在一个eppendorf
管中混合。放入100℃加热5-10min，取上清点样。
2.
分离胶及浓缩胶的制备
①
将玻璃板、样品梳、Spacer用洗涤剂洗净，用ddH2O冲洗数次，再用乙醇擦拭，晾干;
②
将两块洗净的玻璃板之间加入Spacer，按照Bio-Rad
Mini
Ⅱ/Ⅲ说明书提示装好玻璃板;
③
按如下体积配制10%分离胶8.0
ml，混匀：ddH2O
3.0
ml;1.0
mol/LTris-HCl
pH=8.8
2.1
ml;30%
Acr-Bis
2.8
ml;10%
SDS
80
ul;10%AP
56
ul;TEMED
6
ul。
④
向玻璃板间灌制分离胶，立即覆一层重蒸水，大约20
min后胶即可聚合;
⑤
按如下体积配制6%浓缩胶3.0
ml，混匀：ddH2O
1.0
mol/LTris-HClpH=6.8
30%
Acr-Bis;2.0
ml
400
ul
600
ul;10%
SDS
10%
AP
TEMED;36ul
24ul
4ul。
⑥
将上层重蒸水倾去，滤纸吸干，灌制浓缩胶，插入样品梳;
⑦
装好电泳系统，加入电极缓冲液，上样20
μl;
⑧
稳压200V，溴酚蓝刚跑出分离胶时，停止电泳，约需45
min～1hr.
⑨
卸下胶板，剥离胶放入染色液中，室温染色1～2
hr;加入脱色液，置于80
rpm脱色摇床上,每20
min更换一次脱色液(10
ml
冰乙酸;45
ml乙醇;45
ml蒸馏水)至完全脱净。
聚丙烯酰胺凝胶具有分子筛效应，可根据蛋白亚基分子量不同将分离蛋白，SDS-PAGE电泳凝胶好坏直接关系到电泳能否成成，一般浓缩胶和分离胶的pH分别是6.7和8.9.
Ⅵ 电泳漆配方 三个配方详细介绍
电泳漆真正准确的名字应该叫做电泳涂料，但是因为习惯，所以很多人现在还是把电泳涂料叫成电泳漆。电泳漆的使用是为了能够让我们的金属涂料能够更好地粘附在金属的表面。而电泳漆，事实上就是作为涂料和金属之间的一个中介。在很多的金属涂料工厂里面，电泳漆是一个非常重要的存在，同时有很多人会选择自己配制电泳漆。那么接下来小编就来给大家介绍一下有关电泳漆的一些配制配方吧。
配方1：
1，按配方加入异丙醇和丁基溶纤剂，然后加入甲基丙烯酸二甲氨基乙酯，丙烯酸，甲基丙烯酸羟乙酯，丙烯酸乙酯，丙烯酸甲酯，苯乙烯和偶氮二异丁晴，搅拌下加热82-88度，反应7h后，加入二羟甲基丙烯酸和去离子水，经0.5h,即成水分散性丙烯酸共聚物。
2，白色色浆配方/质量份丙烯酸共聚物40钛白粉120去离子水65把以上各组分加入球磨机中研磨分散1h，即得白色浆。
3，白色涂料配方/质量分颜料浆53.3丙烯酸共聚物88.0苯代三聚氰胺树脂26.3去离子水819.4在混合器中加入以上组分进行混合均匀，然后，在慢慢加入去离子水再混合即成为涂料。用途:用于汽车车身，钢板，阳极处理过的铝材的途装。
配方2
1、异辛醇封闭甲基苯乙烯异氰酸酯(TMI)在装有搅拌器，温度计，滴液漏斗和回流冷凝器的四口瓶中加入一定量的TMI，60EH)，滴加完毕后，保温1h，升温至75度，继续反应，直到残余NCO含量小于1%。
2、在反应器中加入助溶剂丙二醇甲醚醋酸酯(PMA)250g，加热搅拌至80度按下列滴加混合单体500g，同时加入引发剂偶氮二异丁晴，2-3h滴加完毕后，升温至90度，补加少量引发剂，保温1-2h，至单体转化率大于98%，降温至50度，用醋酸中和，加入适量的水稀释。
3、将润湿分散剂和部分蒸馏水放入高速搅拌的容器中，搅拌数分钟后，加入钛白粉，搅拌至分散均匀，然后将基料树脂和环烷酸铅混合物缓慢加入，并同时高速分散，加完后，再分散30min，即可。液体固体分为10-12%。用细密绸布过滤后投入电泳漕，120V下电泳涂片3min，冲洗，凉干，170度烘烤25min，固化。
配方3
1、季戊四醇加入带搅拌器，温度计，回流冷凝剂的反应釜中，加热至121度，加入催化剂，再升高温度至237.8度时，一定的速率加入二甲苯以共沸除去水，继续反应直至酸值达到5-7，用二甲苯稀释该混合物得70%固体分，冷却至148.9度时，加入620份丙二醇丙基醚，即得CTBN改性醇酸。
2、在惰性气体保护下加入带有搅拌器，温度计，回流冷凝器得反应釜中，加热至93.32h55min内，以起始量10%添量添加甲基丙烯酸甲酯，苯乙烯，甲基丙烯酸二甲氨基乙酯，聚合引发剂，CTBN改性醇酸的混合物。
3、在该温度下，再加入过氧化二枯基引发剂30份，丙二醇丙基醚14030min内升高温度至137.8度，保温1h后，加入剩余的过氧化二枯基引发剂150份和丙二醇丙基醚50并于137.5度下保温2h，然后冷却，即得到丙烯酸酯化醇酸。
4、加入混合器中，然后加入后3种组分混合均匀，接着慢慢加入去离子水混合均匀，得固体分为10%的含量。
总结：小编在上文中为大家介绍了三种配置电泳漆的配方，大家通过上文都可以看到三种配方其实都非常的复杂。同时事实上其中牵涉到非常多专业的化学用品以及化学方法。所以对于没有实践经验的人来说，小编还是非常不建议大家自己配置电泳漆的，如果可以的话，小编还是建议大家能够自行购买电泳漆。因为自己购买电泳漆不仅会非常的方便，而且也能够省去很多的中间环节。
Ⅶ 电泳10%APS怎么配速求答案 多谢
它是质量体积比。
比如5ml 10% APS，将0.5gAPS溶于5ml去离子水中，4℃避光保存。-----按比例放大。
Ⅷ 你知道变性聚丙烯酰胺凝胶电泳的那个胶是怎么配置的需要哪些必备药品还有用水平电泳可以吗
我把我们实验室的实验讲义发给你，供你参考。
你做的应该是蛋白质的电泳吧，只能用垂直电泳。水平电泳用于分离DNA或RNA。
实验十一 SDS-PAGE检测表达蛋白
1．目的
学习SDS-PAGE的基本操作，学会用SDS-PAGE检测蛋白。
2．原理
蛋白质在加热变性以后与SDS结合，带上负电荷，在电场的作用下，向正极移动，结果按分子量大小排列在胶板上，含量多的蛋白带纹粗。
3．器材
旋涡混合器，微量移液取样器，移液器吸头，1.5ml 微量离心管，双面离心管架，台式冷冻离心机，制冰机，超声波破碎仪，电磁炉，电泳仪，垂直电泳槽及配套的玻璃和密封条、梳子等，摇菌试管，三角烧瓶，接种环，饭盒。
4．试剂
SDS（十二烷基磺酸钠），Acr（丙烯酰胺），Bis（N,N’-亚甲基双丙烯酰胺），Tris（三羟甲基氨基甲烷），甘氨酸，盐酸，Aps（过硫酸氨），TEMED（四甲基乙二胺），蛋白分子量标准（97.4，66.2，43，31，20.1，14.4 kDa），溴酚蓝，甘油，冰醋酸，乙醇，b-2-巯基乙醇，考马斯亮蓝R250，甲醇，乙醇。
5．实验准备
1.0mol/L Tris HCl，pH8.8（4°C保存）；0.5mol/L Tris HCl，pH6.8（4°C保存）；10%SDS（室温保存）；30%Acr/Bis（30g Acr+0.8g Bis dd water 定容至100mL，4°C保存）；10%Aps （-20°C保存）；2´上样缓冲液（0.5mol/L Tris HCl，pH6.8 2mL，甘油2mL，20%SDS 2mL，0.1%溴酚蓝 0.5mL，b-2-巯基乙醇 1.0mL，dd water 2.5mL，室温存放）；5´电泳缓冲液（Tris 7.5g ，甘氨酸36g，SDS 2.5g，加dd water至500mL，使用时稀释五倍）；考马斯亮蓝染色液（考马斯亮蓝R250 0.25g + 45ml甲醇+10mL冰醋酸，用dd water定容至100mL）；脱色液（95%乙醇：冰醋酸：水= 4.5：0.5：5，体积比）；
6．操作步骤
（1） 将表达后的菌体与2´上样缓冲液按1：1混匀于微量离心管中。
（2） 用超声波破碎仪脉冲10次，每次10秒。中间间隔时放入冰中降温。注意一定要将超声波探头插入容液底部，在溶液表面或上部时容易起泡！
（3） 将上述微量离心管插入水漂中，放在电磁炉锅里的沸水中煮3~5min。然后立即插入冰中。（可在-20°C冰柜中保存）。
（4） 组装电泳玻璃并用细橡胶管密封底部和侧面然后用夹子夹住（观察教师的演示）。插入梳子后在玻璃上距离梳子齿底部1cm的地方做一个标记。
（5） 配制10%分离胶。按顺序和量取下列溶液混在一个50mL的小烧杯中（注意Tris为 pH8.8）：
Acrylamide-bis 3.96 mL
1M Tris PH8.8 4.38 mL
d.d Water 3.432 mL
10% SDS 118.8 mL
TEMED 9.9 mL
10%APS 118.8 mL
（6） 加完APS后拿起烧杯轻轻转动几下底部将溶液混匀后，立刻缓缓倒入玻璃夹缝中，直到液面与所作的标记齐平。剩下的胶液留在小烧杯中，倾斜放置。然后在上部用1000ml微量移液器轻轻地沿玻璃壁来回移动加满dd water（尽可能不破坏下面的胶液）。然后静置30min。直到烧杯中剩余的溶液凝固。倒出蒸馏水，并倒置玻璃尽可能将水倒尽。
（7） 配支持胶。按顺序和量（注意体积单位！）取下列溶液混在一个50mL的小烧杯中（注意Tris为 pH6.8）：
Acrylamide-bis 0.675 mL
0.5M Tris pH6.8 0.563 mL
dd water 3.165 mL
10% SDS 45 mL
TEMED 7.5 mL
10% APS 45 mL
（8） 加完APS后拿起烧杯轻轻转动几下底部将溶液混匀后，立刻倒入玻璃夹缝中，液面与玻璃上边缘齐平。然后再慢慢插入梳子，静置约20min。烧杯中剩下的溶液倾斜放置直到溶液凝固。（此状态可以用塑料薄膜包起来放入冰箱过夜）。
（9） 小心拔出梳子以后，用注射器针头（剪平尖部）吸取梳子齿形成的加样槽中的水，并修平加样槽底部的胶面。
（10） 选取几个形态好的加样槽，在一张纸上做好对应的标记，用微量移液器在侧面的一个加样槽中加入20mL 蛋白分子量，其它槽中加入10～20mL自己制作的样品。
（11） 加完样品后，再用微量移液器吸取电泳缓冲液小心把加样槽液面都补平。电泳槽上部倒满电泳缓冲液（约250ml,淹没过加样槽的液面！），电泳槽的下部倒入一半电泳缓冲液（约180ml）。
（12） 接好电极，将电流调至10mA，待溴酚蓝移到分离胶后，在将电流调至18mA，电泳约2~3h，期间随时观察电泳槽上部的液体是否有泄漏（泄漏导致液面下降，电流中断）！当溴酚蓝移到玻璃距底部0.5cm时切断电源。
（13） 在一个搪瓷盘里准备适量的考马斯亮蓝染色液。
（14） 倒掉电泳槽中的缓冲液，取下玻璃，小心用铲子从下部将带有缺口的玻璃板撬起（切不可损坏胶！）。用铲子切去上部的支持胶，并把分离胶从玻璃上剥离倒染液搪瓷盘里（切不可损坏胶！）。
（15） 染色2h后，在将染液倒回瓶子里以备重复使用。在饭盒里倒入脱色液，过夜。
（16） 观察脱色后胶里的蓝色带纹，与对照比较或寻找异常粗的带纹，并比较其分子量，判断是否是预期的基因产物。
（17） 清理桌面，写实验报告。
Ⅸ 垂直式蛋白质电泳的操作步骤
实验试剂和器材
1.材料： 低分子量标准蛋白试剂盒: 低分子量标准蛋白： 兔磷酸化酶B
MW=97,400
牛血清白蛋白
MW=66,200
兔肌动蛋白
MW=43,000
牛碳酸酐酶
MW=31,000
胰蛋白酶抑制剂
MW=20,100
鸡蛋清溶菌酶
MW=14,400
开封后溶于200µl蒸馏水，置-20℃保存，使用前室温融化，沸水浴中加热3-5分钟后上样。 样品1：称3mg样品1，加2 ml蒸馏水溶解。
2.实验试剂
(1) 30%丙烯酰胺（Acr）：称Acr30g，甲叉双丙烯酰胺
（Bis）0.8g，加蒸馏水至100ml，过滤后置棕色瓶中，
4℃贮存可用1-2月。
（2）10%SDS（十二烷基磺酸钠）
（3）1.5mol/L pH8.8 Tris-HCl缓冲液：称取Tris18.2g，
加入50ml水，用1mol/L盐酸调pH8.8， 最后用蒸馏水定容至100ml。
（4）1.0mol/LpH6.8Tris-HCl缓冲液：称取Tris12.1g，加
入50ml水，用1mol/L盐酸调pH6.8， 最后用蒸馏水定容至100ml。
（5）0.05mol/LpH8.0Tris-HCl缓冲液：称取Tris0.6g，加 入50ml水，用1mol/L盐酸调pH8.0，最后用蒸馏水定容至100ml。
（7）10%过硫酸铵(AP)
（8）TEMED（四甲基乙二胺）
（9）样品溶解液：SDS（100mg）+巯基乙醇（0.1ml）+
溴酚蓝（2mg）+甘油（2g） +0.05mol/L pH8.0Tris-HCl（2ml），最后定容至10ml。
（10）固定液：取50%甲醇454ml，冰乙酸46ml混匀。
（11）染色液：称取考马斯亮蓝R250 0.125g，加上述固定液 250ml，过滤后备用。
（12）脱色液：冰乙酸75ml，甲醇50ml，加蒸馏水定容至1000ml。
（13）电极缓冲液（内含0.1%SDS，0.05mol/LTris- 0.384mol/L甘氨酸缓冲液pH8.3）：称Tris6.0g，甘 氨酸28.8g，加入SDS1g，加蒸馏水使其溶解后定容至1000ml。
实验过程
1.将玻璃板用蒸馏水洗净晾干, 准备2个干净的锥形瓶.
2.把玻璃板在灌胶支架上固定好.※固定玻璃板时，两边用力一定要均匀，防止夹坏玻璃板.
3.按比例配好分离胶,用移液管快速加入,大约5厘米左右,之后加少许蒸馏水,静置40分钟.※凝胶配制过程要迅速, 催化剂TEMED要在注胶前再加入,否则凝结无法注胶.注胶过程最好一次性完成,避免产生气泡.
※水封的目的是为了使分离胶上延平直，并排除气泡 ※凝胶聚合好的标志是胶与水层之间形成清晰的界面.
4.倒出水并用滤纸把剩余的水分吸干,按比例配好浓缩胶,连续平稳加入浓缩胶至离边缘5mm处,迅速插入样梳,静置40分钟. ※样梳需一次平稳插入,梳口处不得有气泡,梳底需水平.
5.拔出样梳后,在上槽内加入缓冲液,没过锯齿时可拆去 底端的琼脂糖. ※要使锯齿孔内的气泡全部排出,否则会影响加样效果.
6、加样三个。 （1）取10µl标准蛋白溶解液于EP管内，再加入10µl 2倍样品缓冲液，上样量为20µl。
（2）取10µl样品1溶液，再加入10µl 2倍样品缓冲液，上样量分别为5µl
和10µl。
7.用微量注射器距槽底三分之一处进样,加样前,样品在沸水中加热3分钟，去掉亚稳态聚合。※注射器不可过低,以防刺破胶体,也不可过高,在样下沉时会发生扩散.※为避免边缘效应,最好选用中部的孔注样.
8.电泳槽中加入缓冲液，接通电源，进行电泳，开始电流恒定在10mA，当进入分离胶后改为20mA，溴酚蓝距凝胶边缘约5mm时，停止电泳。
9.凝胶板剥离与染色：电泳结束后，撬开玻璃板，将凝胶板做好标记后放在大培养皿内，加入染色液，染色1小时左右。10.脱色：染色后的凝胶板用蒸馏水漂洗数次，再用脱色液脱色，直到蛋白质区带清晰。※剥胶时要小心,保持胶完好无损,染色要充分.
以上是我实验课件，希望有所帮助！
Ⅹ 10%的AP怎么配
有两种方法。
1.过硫酸胺：0.1g
2.蒸馏水：1ml。
现用现配，可先将过硫酸胺干粉称好分量后放在1.5mlEP管中，一次性多装几管，使用时加入蒸馏水水即可，溶解后，4℃保存，保存时间为1周的时间。
过硫酸铵为白色结晶或粉末。无气味。干燥纯品能稳定数月，受潮时逐渐分解放出含臭氧的氧，加热则分解出氧气而成过硫酸铵过硫酸铵为焦硫酸铵。易溶于水，水溶液呈酸性，并在室温中逐渐分解，在较高温度时很快分解放出氧气，并生成硫酸氢铵。10%过硫酸铵的配制的配置属于溶质的质量分数问题。可用下式表示：溶质的质量分数=(溶质质量/溶液质量)×100%。注意：10％过硫酸胺溶液在4℃保存时间可使用2周左右，超过期限会失去催化作用。