電泳10ap怎麼配置
Ⅰ 電泳濃縮膠濃度怎麼選取
濃縮膠一般都是5%的，下面的是5ML的配方，其餘的你可以自己算了
5ml
H2O 3.6
acrylamide mix（30%） 0.62
1M Tris(PH6.8) 0.63
10% SDS 0.05
10% AP 0.05
TEMED 0.005
Ⅱ 電泳陽極液怎麼配置,需要哪些材料配置方法
陰極電泳塗裝的陽極液配置,主要材料用純水和醋酸.將純水放入陽極槽內,加入10-15的醋酸,啟動循環泵,進行陽極液與陽極柱的循環,測定電導率達到500us/cm就完成陽極液配置了.如果電導率達不到,可以適量補加醋酸,將電導率調整到要求就可以了.
Ⅲ 非變性聚丙烯醯胺凝膠電泳的實驗步驟
1、PAGE膠電泳緩沖液配置
1）丙烯醯胺單體貯液：14.55g丙烯醯胺加上0.45g N，N'-甲叉雙丙烯醯胺，先用40mL雙蒸水攪拌溶解，直到溶液變成透明，再用雙蒸水稀至50mL，過濾。用棕色瓶4°C保存備用。
2)濃縮膠緩沖液貯液(0.5mol/L Tris-HCl，pH6.8)：3.03gTris溶解在40mL雙蒸水中，用4mol/L鹽酸調pH6.8。再用雙蒸水稀至50mL。保存在4°C備用。
3)分離膠緩沖液貯液(1.5mol/L Tris-HCl，pH8.9)：18.16gTris溶解在80mL雙蒸水中，用4mol/L鹽酸調pH8.9。再用雙蒸水稀至100mL，保存在4°C備用。
4)10%（AP）過硫酸銨：0.1g過硫酸銨溶入1.0mL雙蒸水，使用前新鮮配製。
5)電極緩沖液(0.025mol/L Tris，0.2mol/L甘氨酸，pH8.3)：15.14gTris加上72.07g甘氨酸，用雙蒸水稀釋到5L。可在室溫保存一個月。
6）樣品緩沖液（0.1mol/L Tris-HCl，pH6.8）：2ml濃縮膠緩沖液貯液加上1mL87%甘油、0.1mg溴酚藍，用雙蒸水稀釋至10mL，可在-20°C保存6個月。
2、Native-PAGE配方 分離膠： 雙蒸水 6.6ml 30%丙烯醯胺溶液 8.0ml 1.5mol/L Tris(pH8.8) 5.0ml 10%過硫酸銨溶液 (W/V) 200μl TEMED 15μl 濃縮膠： 雙蒸水 6.8ml 30%丙烯醯胺溶液 1.7ml 0.5 mol/ LTris(pH6.8) 1.25ml 10%過硫酸銨溶液 (W/V) 100μl TEMED 10μl 3、Native-PAGE電泳
將玻璃板、膠墊、梳子用雙蒸水洗干凈，用酒精棉球擦拭，將電泳槽安裝好，配製分離膠(12%)和濃縮膠(5%)如表1。過硫酸銨和TEMED最後加入，加入後聚合即開始，應立即混勻倒入兩塊玻璃板之間。分離膠倒入兩塊玻璃板間，應該留下適合的高度，使點樣孔前端離分離膠有2.5cm左右的距離，在膠頂部緩緩加入約0.5cm高的雙蒸水，待分離膠聚合完全後，傾去上層的雙蒸水，用雙蒸水清洗凝膠頂層，用吸水紙吸去殘余的水滴。將濃縮膠倒入玻璃板夾層，插上梳子，待濃縮膠聚合完全後，拔去梳子，立即用雙蒸水清洗點樣孔。加入電極緩沖液，將樣品用微量進樣器點入點樣孔底部，200伏電泳。當溴酚藍到達分離膠時，電壓改為250伏，繼續電泳至溴酚藍到達凝膠底部。將凝膠剝下，浸泡在100ml的底物液中，染色1小時，待膠帶顯色後立即照相。然後將凝膠進行常規的考馬斯亮藍染色。
Ⅳ win10無線路由器ap模式怎麼設置
把無線網卡插好，安裝好所提示的驅動，打開配置程序。
無線網卡如何設置AP模式
點擊最後一項配置。
在AP模式中點擊「開」。
點擊確定。（可能會出錯，別去管它）
設置好所有的選項。（這些就不細講了），然後點擊應用。
（這里很大幾率會提示失敗，沒關系，也別去管他，等會兒全部設置好了重新開啟一遍就行了）
點擊本地連接。
點擊屬性。
選擇高級。
點擊「允許其他......」。
點擊確定，然後再點擊下方的確定。（在4、5步出錯的朋友們這時就完全關閉無線網卡的配置程序，重新開啟，就能成功啦！）
Ⅳ sds-page凝膠電泳怎麼制備
SDS-PAGE電泳可用於分離蛋白質和核苷酸
，這里綜述了SDS-PAGE實驗原理、試劑和器材、以及實驗操作步驟。
一.
實驗原理：
SDS-PAGE是對蛋白質進行量化，比較及特性鑒定的一種經濟、快速、而且可重復的方法。該法是依據混合蛋白的分子
量不同來進行分離的。
SDS是一種去垢劑，可與蛋白質的疏水部分相結合，破壞其折疊結構，並使其廣泛存在於一個廣泛均一的溶液中。SDS蛋白質復合物的長度與其分子
量成正比。在樣品介質和凝膠中加入強還原劑和去污劑後，電荷因素可被忽略。蛋白亞基的遷移率取決於亞基分子量。
二.
試劑和器材：
試劑：1.
5x樣品緩沖液(10ml)：0.6ml
1mol/L的Tris-HCl(pH6.8)，5ml
50%甘油，2ml
10%的SDS，0.5ml巰基乙醇，1ml
1%溴酚藍，0.9ml蒸餾水。可在4℃保存數周，或在-20℃保存數月。
2.
凝膠貯液：在通風櫥中，稱取丙烯醯胺30g，甲叉雙丙烯醯胺0.8g，加重蒸水溶解後，定容到100ml。過濾後置棕色瓶中，4℃保存，一般可放置1個月。
3.
pH8.9分離膠緩沖液：
Tris
36.3g
，加1mol/L
HCl
48ml，加重蒸水80ml使其溶解，調pH8.9，定容至100ml，
4℃保存。
4.
pH6.7濃縮膠緩沖液：
Tris
5.98g
，加1mol/L
HCl
48ml，加重蒸水80ml使其溶解，調pH6.7，定容至100ml，
4℃保存。
5.
TEMED(四乙基乙二胺)原液
6.10%過硫酸銨(用重蒸水新鮮配製)
7.
pH8.3
Tris-甘氨酸電極緩沖液：稱取Tris
6.0g，甘氨酸28.8g，加蒸餾水約900ml，調pH8.3後，用蒸餾水定容至1000ml。置4℃保存，臨用前稀釋10倍。
8.
考馬斯亮藍G250染色液：稱100mg考馬斯亮藍G250，溶於200ml蒸餾水中，慢慢加入7.5ml
70%的過氯酸，最後補足水到250ml，攪拌1小時，小孔濾紙過濾。
器材：電泳儀
，電泳槽，水浴鍋，搖床。
三.
實驗操作;
1.
樣品制備
將蛋白質樣品與5X樣品緩沖液(20ul+5ul)在一個eppendorf
管中混合。放入100℃加熱5-10min，取上清點樣。
2.
分離膠及濃縮膠的制備
①
將玻璃板、樣品梳、Spacer用洗滌劑洗凈，用ddH2O沖洗數次，再用乙醇擦拭，晾乾;
②
將兩塊洗凈的玻璃板之間加入Spacer，按照Bio-Rad
Mini
Ⅱ/Ⅲ說明書提示裝好玻璃板;
③
按如下體積配製10%分離膠8.0
ml，混勻：ddH2O
3.0
ml;1.0
mol/LTris-HCl
pH=8.8
2.1
ml;30%
Acr-Bis
2.8
ml;10%
SDS
80
ul;10%AP
56
ul;TEMED
6
ul。
④
向玻璃板間灌制分離膠，立即覆一層重蒸水，大約20
min後膠即可聚合;
⑤
按如下體積配製6%濃縮膠3.0
ml，混勻：ddH2O
1.0
mol/LTris-HClpH=6.8
30%
Acr-Bis;2.0
ml
400
ul
600
ul;10%
SDS
10%
AP
TEMED;36ul
24ul
4ul。
⑥
將上層重蒸水傾去，濾紙吸干，灌制濃縮膠，插入樣品梳;
⑦
裝好電泳系統，加入電極緩沖液，上樣20
μl;
⑧
穩壓200V，溴酚藍剛跑出分離膠時，停止電泳，約需45
min～1hr.
⑨
卸下膠板，剝離膠放入染色液中，室溫染色1～2
hr;加入脫色液，置於80
rpm脫色搖床上,每20
min更換一次脫色液(10
ml
冰乙酸;45
ml乙醇;45
ml蒸餾水)至完全脫凈。
聚丙烯醯胺凝膠具有分子篩效應，可根據蛋白亞基分子量不同將分離蛋白，SDS-PAGE電泳凝膠好壞直接關繫到電泳能否成成，一般濃縮膠和分離膠的pH分別是6.7和8.9.
Ⅵ 電泳漆配方 三個配方詳細介紹
電泳漆真正准確的名字應該叫做電泳塗料，但是因為習慣，所以很多人現在還是把電泳塗料叫成電泳漆。電泳漆的使用是為了能夠讓我們的金屬塗料能夠更好地粘附在金屬的表面。而電泳漆，事實上就是作為塗料和金屬之間的一個中介。在很多的金屬塗料工廠裡面，電泳漆是一個非常重要的存在，同時有很多人會選擇自己配製電泳漆。那麼接下來小編就來給大家介紹一下有關電泳漆的一些配製配方吧。
配方1：
1，按配方加入異丙醇和丁基溶纖劑，然後加入甲基丙烯酸二甲氨基乙酯，丙烯酸，甲基丙烯酸羥乙酯，丙烯酸乙酯，丙烯酸甲酯，苯乙烯和偶氮二異丁晴，攪拌下加熱82-88度，反應7h後，加入二羥甲基丙烯酸和去離子水，經0.5h,即成水分散性丙烯酸共聚物。
2，白色色漿配方/質量份丙烯酸共聚物40鈦白粉120去離子水65把以上各組分加進球磨機中研磨分散1h，即得白色漿。
3，白色塗料配方/質量分顏料漿53.3丙烯酸共聚物88.0苯代三聚氰胺樹脂26.3去離子水819.4在混合器中加入以上組分進行混合均勻，然後，在慢慢加入去離子水再混合即成為塗料。用途:用於汽車車身，鋼板，陽極處理過的鋁材的途裝。
配方2
1、異辛醇封閉甲基苯乙烯異氰酸酯(TMI)在裝有攪拌器，溫度計，滴液漏斗和迴流冷凝器的四口瓶中加入一定量的TMI，60EH)，滴加完畢後，保溫1h，升溫至75度，繼續反應，直到殘余NCO含量小於1%。
2、在反應器中加入助溶劑丙二醇甲醚醋酸酯(PMA)250g，加熱攪拌至80度按下列滴加混合單體500g，同時加入引發劑偶氮二異丁晴，2-3h滴加完畢後，升溫至90度，補加少量引發劑，保溫1-2h，至單體轉化率大於98%，降溫至50度，用醋酸中和，加入適量的水稀釋。
3、將潤濕分散劑和部分蒸餾水放入高速攪拌的容器中，攪拌數分鍾後，加入鈦白粉，攪拌至分散均勻，然後將基料樹脂和環烷酸鉛混合物緩慢加入，並同時高速分散，加完後，再分散30min，即可。液體固體分為10-12%。用細密綢布過濾後投入電泳漕，120V下電泳塗片3min，沖洗，涼干，170度烘烤25min，固化。
配方3
1、季戊四醇加入帶攪拌器，溫度計，迴流冷凝劑的反應釜中，加熱至121度，加入催化劑，再升高溫度至237.8度時，一定的速率加入二甲苯以共沸除去水，繼續反應直至酸值達到5-7，用二甲苯稀釋該混合物得70%固體分，冷卻至148.9度時，加入620份丙二醇丙基醚，即得CTBN改性醇酸。
2、在惰性氣體保護下加入帶有攪拌器，溫度計，迴流冷凝器得反應釜中，加熱至93.32h55min內，以起始量10%添量添加甲基丙烯酸甲酯，苯乙烯，甲基丙烯酸二甲氨基乙酯，聚合引發劑，CTBN改性醇酸的混合物。
3、在該溫度下，再加入過氧化二枯基引發劑30份，丙二醇丙基醚14030min內升高溫度至137.8度，保溫1h後，加入剩餘的過氧化二枯基引發劑150份和丙二醇丙基醚50並於137.5度下保溫2h，然後冷卻，即得到丙烯酸酯化醇酸。
4、加入混合器中，然後加入後3種組分混合均勻，接著慢慢加入去離子水混合均勻，得固體分為10%的含量。
總結：小編在上文中為大家介紹了三種配置電泳漆的配方，大家通過上文都可以看到三種配方其實都非常的復雜。同時事實上其中牽涉到非常多專業的化學用品以及化學方法。所以對於沒有實踐經驗的人來說，小編還是非常不建議大家自己配置電泳漆的，如果可以的話，小編還是建議大家能夠自行購買電泳漆。因為自己購買電泳漆不僅會非常的方便，而且也能夠省去很多的中間環節。
Ⅶ 電泳10%APS怎麼配速求答案 多謝
它是質量體積比。
比如5ml 10% APS，將0.5gAPS溶於5ml去離子水中，4℃避光保存。-----按比例放大。
Ⅷ 你知道變性聚丙烯醯胺凝膠電泳的那個膠是怎麼配置的需要哪些必備葯品還有用水平電泳可以嗎
我把我們實驗室的實驗講義發給你，供你參考。
你做的應該是蛋白質的電泳吧，只能用垂直電泳。水平電泳用於分離DNA或RNA。
實驗十一 SDS-PAGE檢測表達蛋白
1．目的
學習SDS-PAGE的基本操作，學會用SDS-PAGE檢測蛋白。
2．原理
蛋白質在加熱變性以後與SDS結合，帶上負電荷，在電場的作用下，向正極移動，結果按分子量大小排列在膠板上，含量多的蛋白帶紋粗。
3．器材
旋渦混合器，微量移液取樣器，移液器吸頭，1.5ml 微量離心管，雙面離心管架，台式冷凍離心機，製冰機，超聲波破碎儀，電磁爐，電泳儀，垂直電泳槽及配套的玻璃和密封條、梳子等，搖菌試管，三角燒瓶，接種環，飯盒。
4．試劑
SDS（十二烷基磺酸鈉），Acr（丙烯醯胺），Bis（N,N』-亞甲基雙丙烯醯胺），Tris（三羥甲基氨基甲烷），甘氨酸，鹽酸，Aps（過硫酸氨），TEMED（四甲基乙二胺），蛋白分子量標准（97.4，66.2，43，31，20.1，14.4 kDa），溴酚藍，甘油，冰醋酸，乙醇，b-2-巰基乙醇，考馬斯亮藍R250，甲醇，乙醇。
5．實驗准備
1.0mol/L Tris HCl，pH8.8（4°C保存）；0.5mol/L Tris HCl，pH6.8（4°C保存）；10%SDS（室溫保存）；30%Acr/Bis（30g Acr+0.8g Bis dd water 定容至100mL，4°C保存）；10%Aps （-20°C保存）；2´上樣緩沖液（0.5mol/L Tris HCl，pH6.8 2mL，甘油2mL，20%SDS 2mL，0.1%溴酚藍 0.5mL，b-2-巰基乙醇 1.0mL，dd water 2.5mL，室溫存放）；5´電泳緩沖液（Tris 7.5g ，甘氨酸36g，SDS 2.5g，加dd water至500mL，使用時稀釋五倍）；考馬斯亮藍染色液（考馬斯亮藍R250 0.25g + 45ml甲醇+10mL冰醋酸，用dd water定容至100mL）；脫色液（95%乙醇：冰醋酸：水= 4.5：0.5：5，體積比）；
6．操作步驟
（1） 將表達後的菌體與2´上樣緩沖液按1：1混勻於微量離心管中。
（2） 用超聲波破碎儀脈沖10次，每次10秒。中間間隔時放入冰中降溫。注意一定要將超聲波探頭插入容液底部，在溶液表面或上部時容易起泡！
（3） 將上述微量離心管插入水漂中，放在電磁爐鍋里的沸水中煮3~5min。然後立即插入冰中。（可在-20°C冰櫃中保存）。
（4） 組裝電泳玻璃並用細橡膠管密封底部和側面然後用夾子夾住（觀察教師的演示）。插入梳子後在玻璃上距離梳子齒底部1cm的地方做一個標記。
（5） 配製10%分離膠。按順序和量取下列溶液混在一個50mL的小燒杯中（注意Tris為 pH8.8）：
Acrylamide-bis 3.96 mL
1M Tris PH8.8 4.38 mL
d.d Water 3.432 mL
10% SDS 118.8 mL
TEMED 9.9 mL
10%APS 118.8 mL
（6） 加完APS後拿起燒杯輕輕轉動幾下底部將溶液混勻後，立刻緩緩倒入玻璃夾縫中，直到液面與所作的標記齊平。剩下的膠液留在小燒杯中，傾斜放置。然後在上部用1000ml微量移液器輕輕地沿玻璃壁來回移動加滿dd water（盡可能不破壞下面的膠液）。然後靜置30min。直到燒杯中剩餘的溶液凝固。倒出蒸餾水，並倒置玻璃盡可能將水倒盡。
（7） 配支持膠。按順序和量（注意體積單位！）取下列溶液混在一個50mL的小燒杯中（注意Tris為 pH6.8）：
Acrylamide-bis 0.675 mL
0.5M Tris pH6.8 0.563 mL
dd water 3.165 mL
10% SDS 45 mL
TEMED 7.5 mL
10% APS 45 mL
（8） 加完APS後拿起燒杯輕輕轉動幾下底部將溶液混勻後，立刻倒入玻璃夾縫中，液面與玻璃上邊緣齊平。然後再慢慢插入梳子，靜置約20min。燒杯中剩下的溶液傾斜放置直到溶液凝固。（此狀態可以用塑料薄膜包起來放入冰箱過夜）。
（9） 小心拔出梳子以後，用注射器針頭（剪平尖部）吸取梳子齒形成的加樣槽中的水，並修平加樣槽底部的膠面。
（10） 選取幾個形態好的加樣槽，在一張紙上做好對應的標記，用微量移液器在側面的一個加樣槽中加入20mL 蛋白分子量，其它槽中加入10～20mL自己製作的樣品。
（11） 加完樣品後，再用微量移液器吸取電泳緩沖液小心把加樣槽液面都補平。電泳槽上部倒滿電泳緩沖液（約250ml,淹沒過加樣槽的液面！），電泳槽的下部倒入一半電泳緩沖液（約180ml）。
（12） 接好電極，將電流調至10mA，待溴酚藍移到分離膠後，在將電流調至18mA，電泳約2~3h，期間隨時觀察電泳槽上部的液體是否有泄漏（泄漏導致液面下降，電流中斷）！當溴酚藍移到玻璃距底部0.5cm時切斷電源。
（13） 在一個搪瓷盤里准備適量的考馬斯亮藍染色液。
（14） 倒掉電泳槽中的緩沖液，取下玻璃，小心用鏟子從下部將帶有缺口的玻璃板撬起（切不可損壞膠！）。用鏟子切去上部的支持膠，並把分離膠從玻璃上剝離倒染液搪瓷盤里（切不可損壞膠！）。
（15） 染色2h後，在將染液倒回瓶子里以備重復使用。在飯盒裡倒入脫色液，過夜。
（16） 觀察脫色後膠里的藍色帶紋，與對照比較或尋找異常粗的帶紋，並比較其分子量，判斷是否是預期的基因產物。
（17） 清理桌面，寫實驗報告。
Ⅸ 垂直式蛋白質電泳的操作步驟
實驗試劑和器材
1.材料： 低分子量標准蛋白試劑盒: 低分子量標准蛋白： 兔磷酸化酶B
MW=97,400
牛血清白蛋白
MW=66,200
兔肌動蛋白
MW=43,000
牛碳酸酐酶
MW=31,000
胰蛋白酶抑制劑
MW=20,100
雞蛋清溶菌酶
MW=14,400
開封後溶於200µl蒸餾水，置-20℃保存，使用前室溫融化，沸水浴中加熱3-5分鍾後上樣。 樣品1：稱3mg樣品1，加2 ml蒸餾水溶解。
2.實驗試劑
(1) 30%丙烯醯胺（Acr）：稱Acr30g，甲叉雙丙烯醯胺
（Bis）0.8g，加蒸餾水至100ml，過濾後置棕色瓶中，
4℃貯存可用1-2月。
（2）10%SDS（十二烷基磺酸鈉）
（3）1.5mol/L pH8.8 Tris-HCl緩沖液：稱取Tris18.2g，
加入50ml水，用1mol/L鹽酸調pH8.8， 最後用蒸餾水定容至100ml。
（4）1.0mol/LpH6.8Tris-HCl緩沖液：稱取Tris12.1g，加
入50ml水，用1mol/L鹽酸調pH6.8， 最後用蒸餾水定容至100ml。
（5）0.05mol/LpH8.0Tris-HCl緩沖液：稱取Tris0.6g，加 入50ml水，用1mol/L鹽酸調pH8.0，最後用蒸餾水定容至100ml。
（7）10%過硫酸銨(AP)
（8）TEMED（四甲基乙二胺）
（9）樣品溶解液：SDS（100mg）+巰基乙醇（0.1ml）+
溴酚藍（2mg）+甘油（2g） +0.05mol/L pH8.0Tris-HCl（2ml），最後定容至10ml。
（10）固定液：取50%甲醇454ml，冰乙酸46ml混勻。
（11）染色液：稱取考馬斯亮藍R250 0.125g，加上述固定液 250ml，過濾後備用。
（12）脫色液：冰乙酸75ml，甲醇50ml，加蒸餾水定容至1000ml。
（13）電極緩沖液（內含0.1%SDS，0.05mol/LTris- 0.384mol/L甘氨酸緩沖液pH8.3）：稱Tris6.0g，甘 氨酸28.8g，加入SDS1g，加蒸餾水使其溶解後定容至1000ml。
實驗過程
1.將玻璃板用蒸餾水洗凈晾乾, 准備2個干凈的錐形瓶.
2.把玻璃板在灌膠支架上固定好.※固定玻璃板時，兩邊用力一定要均勻，防止夾壞玻璃板.
3.按比例配好分離膠,用移液管快速加入,大約5厘米左右,之後加少許蒸餾水,靜置40分鍾.※凝膠配製過程要迅速, 催化劑TEMED要在注膠前再加入,否則凝結無法注膠.注膠過程最好一次性完成,避免產生氣泡.
※水封的目的是為了使分離膠上延平直，並排除氣泡 ※凝膠聚合好的標志是膠與水層之間形成清晰的界面.
4.倒出水並用濾紙把剩餘的水分吸干,按比例配好濃縮膠,連續平穩加入濃縮膠至離邊緣5mm處,迅速插入樣梳,靜置40分鍾. ※樣梳需一次平穩插入,梳口處不得有氣泡,梳底需水平.
5.拔出樣梳後,在上槽內加入緩沖液,沒過鋸齒時可拆去 底端的瓊脂糖. ※要使鋸齒孔內的氣泡全部排出,否則會影響加樣效果.
6、加樣三個。 （1）取10µl標准蛋白溶解液於EP管內，再加入10µl 2倍樣品緩沖液，上樣量為20µl。
（2）取10µl樣品1溶液，再加入10µl 2倍樣品緩沖液，上樣量分別為5µl
和10µl。
7.用微量注射器距槽底三分之一處進樣,加樣前,樣品在沸水中加熱3分鍾，去掉亞穩態聚合。※注射器不可過低,以防刺破膠體,也不可過高,在樣下沉時會發生擴散.※為避免邊緣效應,最好選用中部的孔注樣.
8.電泳槽中加入緩沖液，接通電源，進行電泳，開始電流恆定在10mA，當進入分離膠後改為20mA，溴酚藍距凝膠邊緣約5mm時，停止電泳。
9.凝膠板剝離與染色：電泳結束後，撬開玻璃板，將凝膠板做好標記後放在大培養皿內，加入染色液，染色1小時左右。10.脫色：染色後的凝膠板用蒸餾水漂洗數次，再用脫色液脫色，直到蛋白質區帶清晰。※剝膠時要小心,保持膠完好無損,染色要充分.
以上是我實驗課件，希望有所幫助！
Ⅹ 10%的AP怎麼配
有兩種方法。
1.過硫酸胺：0.1g
2.蒸餾水：1ml。
現用現配，可先將過硫酸胺乾粉稱好分量後放在1.5mlEP管中，一次性多裝幾管，使用時加入蒸餾水水即可，溶解後，4℃保存，保存時間為1周的時間。
過硫酸銨為白色結晶或粉末。無氣味。乾燥純品能穩定數月，受潮時逐漸分解放出含臭氧的氧，加熱則分解出氧氣而成過硫酸銨過硫酸銨為焦硫酸銨。易溶於水，水溶液呈酸性，並在室溫中逐漸分解，在較高溫度時很快分解放出氧氣，並生成硫酸氫銨。10%過硫酸銨的配製的配置屬於溶質的質量分數問題。可用下式表示：溶質的質量分數=(溶質質量/溶液質量)×100%。注意：10％過硫酸胺溶液在4℃保存時間可使用2周左右，超過期限會失去催化作用。